研 究 概 述

    

2003年,德国神经解剖学家Heiko Braak及其团队提出Braak假说,即肠道中形成的异常𝛼-突触核蛋白(𝛼-synuclein𝛼-Syn)聚集体可沿迷走神经通路向中枢神经系统传播,先后侵袭后脑和中脑,最终在中脑黑质致密部富集,进而触发帕金森病(PD)的核心神经损伤。 

 

      为验证该假说,卢森堡系统生物医学中心研究团队构建了一种中脑-后脑类器官组装体模型,在体外成功重现了𝛼-Syn的病理传播过程。他们的研究发现,来源于携带三倍体SNCA基因的PD患者iPSC的后脑类器官HBO与健康中脑类器官MO共培养后,𝛼-Syn会异常聚集至中脑区域,其磷酸化产物pS129也被更过地释放到胞外。总体而言,这些异常聚集体可以从后脑扩散至健康中脑,并诱导中脑出现𝛼-Syn表达上调与突触功能紊乱等病理特征。

 

      借助Maestro MEA系统分析发现,源自后脑的𝛼-Syn病理可显著改变MO-HBO组装体的电生理信号传导方向,使之发生偏移。在健康MO-健康HBO组装体中,约80%信号起源于中脑;而在健康MO-PD HBO组装体中,约60%信号起源于后脑。该结果表明,突触功能异常可直接转化为电生理活动的变化,而MEA技术能灵敏捕捉到与病理传播相关的功能性损伤。

 

       综上,本研究不仅为解析𝛼-Syn病理传播及PD进展机制提供了新的视角,也为筛选靶向该病理过程的治疗药物奠定了重要的体外研究基础。上述成果已于20255月发表于《Advanced Science》(IF=14.1)。

 

微电极阵列(MEA)电生理功能验证
 

 

     

      为了验证 “中脑MO-后脑HBO组装体” 模型是否具备功能性神经元连接以及信号传导的方向性,研究团队开展了如下实验:

 

      首先,构建了一套定制化的双腔室微通道装置。该装置通过微通道器件连接两个独立腔室,将健康组MO  HBO 分别置于两个独立腔室中。腔室间的微通道与 12  MEA 板的平面电极阵列精准对位(图4C),由此构成 MD-MEA 集成检测系统。

 

      随后,借助 Maestro MEA 平台对两类类器官的电生理活动进行长期监测与分析。 图4D结果显示,在共培养的前 21 天内,组装体的动作电位(Spike)与平均放电频率(MFR)均呈显著上升趋势,21 天后则逐步下降,表明其电活动随培养时间呈动态波动。接下来,使用AxISMatlab软件对采集的信号进行分析。软件通过各通道内各电极所记录到的信号时间对应信息,追溯spike首次被检测到的电极位置,进而判断信号起源于中脑区域或后脑区域(具体分析方法参见文末“MEA实验流程4部分)。统计表明,约80%的动作电位及簇放电起源于MO区域,仅约20%来自HBO(图4E)。并且大部分时间段都维持这一趋势,这一结果直接证实MOHBO之间存在稳定的轴突双向通讯,且信号始发具有明显的区域倾向性。

 

                    
图4.中脑- 后脑类器官组装体的构建与表征

C)将定制MDMEA孔电极阵列精准贴合。比例尺 = 100 μm

D)健康组组装体在 MD-MEA 系统上共培养50 多天期间,Sipke数量与MFR随时间变化曲线。

E)健康组组装体MD-MEA 记录到的SpikeBurst传导事件(HBO→MO或反方向)占比统计随时间变化图(n=3

 

   

       最后,团队比较了健康MO-健康HBO组装体(HH)与健康MO -PD HBO组装体(HPD)之间信号通讯的差异。图 6E&F结果显示,H–PD组装体在培养期间出现了显著的电信号方向偏移:其中约60%spikeburst起源于后脑区域,仅约40%来自中脑区域。这一模式与在H–H组装体中观察到的以中脑为优势起点的信号特征(约80%来自中脑)形成鲜明对比。值得注意的是,该异常的方向偏移在培养至第32天时逐渐消失,恢复至与H–H组装体相似的模式。     

 

 

 6.  HH HPD组装体传导事件占比统计图

E, F)组装体MD-MEA 记录到的SpikeBurst传导事件(HBO→MO或反方向)占比统计随时间变化图(n=3)。

       上述MEA电生理结果结合逆行病毒示踪及病理分析等多种检测结果共同证实:帕金森病相关的病理性𝛼-Syn可从后脑类器官传播至健康中脑类器官,并首先引发突触功能紊乱与电信号传导方向异常,在体外验证了𝛼-Syn沿脑干自下而上的病理传播假说。

 

 

 

 

MEA实验流程

 

1. 微通道-MEAMD-MEA)系统构建

       采用聚二甲基硅氧烷(PDMS)材料制备微通道器件(MD),并精准对位于12MEA板(Axion BiosystemsM768CL130Pt200的电极区域。在连接两个类器官的微通道内,沿通道轴向以200 μm间距排列最多8个记录电极。该系统设计旨在引导类器官间轴突沿预定微通道定向生长,并在电学隔离条件下建立稳定、可控的类器官互连微环境。

 

2. MEA板表面包被

       为促进细胞黏附与生长,MEA板依次进行两步包被处理:首先,使用含0.1 mg/mL多聚赖氨酸(SigmaAldrich, P7886)的PBS溶液于37℃包被过夜;随后,更换为含1 mg/mL层粘连蛋白(SigmaAldrich, L2020)的PBS溶液,继续37℃孵育1小时。孵育结束后移除层粘连蛋白溶液,使用PBS洗涤两次,以去除未结合蛋白,获得适宜细胞黏附的功能化表面。

 

3. 类器官接种与长期培养

       类器官在96孔超低吸附板中分化培养20天后,转移至预包被的MDMEA系统相应腔室中,并辅以少量基质胶(Geltrex)协助固定。类器官在分化培养基中继续培养最长至52天,期间每周进行12次电生理记录。记录时间以分化起始后第20天为基准,表示为体外培养天数(DIV)。整个培养过程在37℃5% CO、静态条件下进行。实验设计中,中脑类器官(MO)始终置于器件左侧腔室,后脑类器官(HBO)置于右侧腔室;MO均来源于健康对照细胞系( Ctrl_2 细胞系),而HBO则分别采用健康对照与携带三倍体SNCA基因的帕金森病模型细胞系( 3×SNCA 细胞系)。

 

4. MEA电生理数据分析

4.1 数据导出与可视化:使用Axis软件导出原始神经电生理记录数据,并借助GraphPad Prism进行统计图表绘制。

 

4.2 信号预处理:数据采样率为12.5 kHz。为消除基线漂移与高频噪声,采用200 Hz高通与3 kHz低通滤波器进行带宽限定;spike检测阈值设定为高于背景噪声标准差6倍(6XSTD)。随后导出各电极记录的spikeburst的时间序列列表,并导入MATLAB进行后续分析。

 

4.3 传导速度测定:通过对同一微通道内各电极记录的spike序列进行互相关分析,识别互相关函数峰值所对应的滞后时间,据此计算信号在相邻电极间的传导延迟。结合已知电极间距(200 μm),推导出信号传导速度,其值分布于1.5–2 m/s范围内。该速度值的分布特征反映了微通道内轴突在长度和生理特性上的自然差异,体现了神经元传导属性的内在异质性。

 

4.4 传导方向判定:采用基于时间窗口的配对电极分析法确定信号传导方向。首先依据互相关分析得到的典型滞后时间设定时间窗口,该窗口对应于信号在相邻电极间传导的预期时间范围。随后,系统筛选两个电极的事件序列,仅保留在首电极事件发生后、于时间窗口内在次电极出现匹配事件的事件对,从而提取具有明确时序关系的传导事件。通过统计从MO传导HBO以及反向传导的事件数量,并计算占比,推断两类类器官间信号传递的整体方向性与优势传导路径。

 

 

 

 

 

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